Возрастные и половые особенности антиоксидантной системы крови кроликов

Несмотря на многофакторность оксидант-антиоксидантных взаимодействий в организме, следует определить антиоксидантный статус как суммарный баланс процессов генерации свободных радикалов и активность систем ферментативной и неферментативной линий защиты организма. В связи с этим важной диагностической проблемой является выбор адекватных показателей, отражающих обе составляющие. Очевидно, что эти показатели должны быть стабильными и множественными. Однако при этом возникает и другая проблема, связанная с выбором интегрированных показателей, которые упрощают информационную оценку антиоксидантного статуса организма. Целью работы явилось исследование интенсивности процессов перекисного окисления липидов и изменения состояния антиоксидантной системы у интактных кроликов разных возрастных групп и пола в постнатальном онтогенезе. Исследования проводили на 30 кроликах (15 самцов и 15 самок), находившихся в условиях биоклиники. Кровь отбирали у животных в возрасте 60, 120 и 180 сут. В плазме крови определяли содержание диеновых коньюгатов и малонового диальдегида, а также неферментативных антиоксидантов токоферола и ретинола. В гемолизатах оценивали активность антиокислительных ферментов: глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы, супероксиддисмутазы и каталазы. Так, активность СОД, КАТ, ГП, ГР и концентрация ДК и МДА в отдельных случаях достоверно понизилась по всем изучаемым группам животных к концу эксперимента. По содержанию холестерина, триглицеридов и глюкозы показаны половые различия самцов и самок кроликов в липидном и энергетическом спектре плазмы крови. В возрасте 180 сут. увеличение холестерола, триглицеридов и глюкозы у самцов составило 13,1%, 37,4% (при Р < 0,001) и 14,1%; соответственно у самок -17,2%, 37,8% (при Р < 0,001) и 15,8%. В возрасте 120 и 180 сут. у животных наблюдалось недостоверное снижение всех показателей по сравнению со значениями, полученными в 60-суточном возрасте. Содержание токоферола у самцов в 120 и 180 дней увеличивалось на 17,9 (при Р < 0,001) и 21,2% (при Р < 0,001), ретинола - на 45,5% (при Р < 0,01) и на 63,6% (при Р < 0,01) по отношению к начальным (60 сут.) значениям. Аналогично у самок отмечали достоверное увеличение концентрации токоферола на 20,7% (при Р < 0,001) и 23,3% (при Р < 0,001), ретинола - на 30,8% (при Р < 0,05) в 180 дней. Таким образом, показано влияние возраста и пола на показатели перекисного и липидного обмена, содержание в плазме крови жирорастворимых витаминов А и Е, активность основных ферментов антиоксидантной защиты животных. По содержанию холестерина и триглицеридов установлены половые различия самцов и самок кроликов в липидном спектре плазмы крови, что в свою очередь позволило определить удельный вес отдельных факторов системы АОС-ПОЛ в онтогенезе кроликов.

1. Аджиев Д.Д. Антиоксидантный статус кроликов в половозрастной динамике и возможности его активации: Автореф. дис.. д-ра биол. Наук. - М., 2017. - С. 8-11.

2. Аджиев Д.Д. Состояние основных параметров антиоксидантной системы крови у кроликов в половозрастной динамике / Д.Д. Аджиев, Г.Ю. Мальцев, С.А. Румянцев, Е.Н. Маляренко, Н.Ф. Заторская // Сельскохозяйственная биология. - 2015. - Т. 50(2). - С. 208-216.

3. Балакирев Н.А. Нормы и рационы кормления кроликов и нутрий / Н.А. Балакирев, В.С. Александрова, Ю.А. Калугин, В.Н. Александров. - Родники Моск. обл.: РАСХН ГНУ НИИ ПЗК им. В.А. Афанасьева, 2001. - С. 4-29.

4. Балакирев Н.А. Кролиководство / Н.А Балакирев Е.А. Тинаева, Н.И. Тинаев, Н.Н. Шумилина. - М.: Колос, 2006. - С. 23-25.

5. Гаврилов В.Б. Спектрофотометрическое определение содержания гидроперекисей липидов в плазме крови / В.Б. Гаврилов, М.И. Мишкорудная // Лаб. дело. -1983. - № 3. - С. 33-35.

6. Ельцова Л.В. Изучение фармакологической активности производных пирроло [1,2-[А]] бензимидазола, проявляющих антиоксидантные и антирадиккальные свойства: Автореф. дис.. канд. биол. наук. - Волгоград, 2010. - С. 7-10.

7. Зенков Н.К. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты / Н.К. Зенков, В.З. Ланкин, Е.Б. Меньщикова. - М.: МАИК «Наука / Интерпериодика», 2001. - 342 с.

8. Кения М.В. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе / М.В. Кения, А.И. Лукаш, Е.П. Гуськов // Успехи современной биологии. -1993. - № 4. - С. 456-470.

9. Мальцев Г.Ю. Способ определения активности каталазы и супероксиддисмутазы эритроцитов на анализаторе открытого типа / Г.Ю. Мальцев, А.В. Васильев // Вопр. мед. химии. - 1994. - № 2. - С. 56-58.

10. Мальцев Г.Ю. Оптимизация определения активности глутатионредуктазы эритроцитов человека на полуавтоматическом анализаторе / Г.Ю. Мальцев, Л.А. Орлова // Вопр. мед. химии. - 1993. - № 2. - С. 59-61.

11. Мальцев Г.Ю. Методы определения содержания глютатиона и активности глутатионпероксидазы в эритроцитах / Г.Ю. Мальцев, Н.В. Тышко // Гигиена и санитария. - 2002. - № 2 - С. 69-72.

12. Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты / Е.Б. Меньщикова, В.З. Ланкин, Н.К. Зенков. - М.: Слово, 2006. - 556 с.

13. Bernabucci U., Ronchi B., Lacetera N. and Nardone A. Influence of body condition score on relationships between metabolic status and oxidative stress in periparturient dairy cows. J. Dairy Sci. - 2005. - № 88. - Рр. 2017-2026.

14. Cadenas Е. and Davies K.J.A. Mitochondrial free radical gelleration, oxidative stress, and aging / Е. Cadenas and K.J.A. Davies // Free Radic. Bio1. Med. - 2000. -№ 29. - Рр. 222-230.

15. Chae H.Z. et al. Protein glutathionylation in the regulation of peroxiredoxins: a family of thiol-specific peroxidases that function as antioxidants, molecular chaperones, and signal modulators / H.Z. Chae, H. Oubrahim, J.W. Park, S.G. Rhee, P.B. Chock // Antioxid. Redox Signal. - 2012. - Mar 15. - № 16(6). - Рр. 506-523.

16. Ernster L. and Nordenbrand K. Microsomal lipid peroxidation. Meth. Enzymol, 1967. - № 10. - Рр. 574-580.

17. Fisher A. et al. Effect of selenium and vitamin E deficiency on differential gene expressionin rat liver / A. Fischer, J. Pallauf, K. Gohil, S.U. Weber, L. Packer, G. Rimbach // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2001. - 285. - Рр. 470-475.

18. Kannan K. and Jain S.K. Oxidative stress and apoptosis / K. Kannan and S.K. Jain // Pathophysiology. - 2000. - № 7. - Рр. 153-163.

19. Matsunami T., Sato Y., Sato T., Yukawa M. Antioxidant Status and Lipid Peroxidation in Diabetic Rats under Hyperbaric Oxygen Exposure. Physiol. Res. - 2010. -№ 59. - Рр. 97-104.

20. May J.M., Qu, Z.C., Morrow J.D. Interaction of ascorbate and alpha-tocopherol in resealed human erythrocyte ghosts. Transmembrane electron transfers and protection from lipid peroxidation. J. Biol Chem. - 1996. - May 3. - № 271(18). - Рр. 10577-10582.

21. Mieyal J.J., Chock P.B. Posttranslational modification of cysteine in redox signaling and oxidative stress: Focus on s-glutathionylation / J.J. Mieyal, P.B. Chock // Antioxid. Redox Signal. - 2012. - Mar 15. - № 16(6). - Рр. 471-475.

22. Mihara M., Uchiyama M., Fukuzawa K. Thiobarbituric acid value on fresh homogenate of rat as a parameter of lipid peroxidation in aging, CCl4 intoxication and vitamin E deficiency // Biochem. Med., 1980. - № 23(3). - Рр. 302-311.

23. Mille G. The purification and properties glutathione peroxidase of erythrocytes. J. // Biol. Chem., 1959. - № 244. - Рр. 502-506.

24. Nishikimi M., Appaji N.A., Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction phenazine methosulfate and molecular oxygen // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1972. - № 46 (2). - Рр. 849-854.

25. Oshino N., Chance B., Sies H., Bucher N. The role of H2O2 - generation in perfused rat liver and the reaction of catalase compound I and hydrogen donors II. Archive // Biochem and Biophys. - 1973. - № 154. - Рр. 117-131.

26. Pastore A., Federici G., Bertini E. and Piemonte E. Analysis of glutathione: Implication in redox and detoxification / A. Pastore, G. Federici, E. Bertini and E. Piemonte // Clinica Chimica Acta. - 2003. - № 333. - Рр. 19-39.

27. Placer Z. Lipoperoxydation systeme im biologichen Material. 2. Mitt Bestinemund der Lipoperoxidationim Sangetier organismus. Die Nahrung, 1968. - № 12(6). - Рр. 679-684.

28. Sharma N., Singh N.K., Singh O.P., Pandey V., Verma P.K. Oxidative stress and antioxidant status during transition period in dairy cows. Australasian Journal of Animal Sciences, 2011 - № 24. - Р. 4.

29. Sordillo L.M., Aitken S.L. Impact of oxidative stress on the health and immune function of dairy cattle. Vet. Immunol. Immunopathol, 2009. - № 128. - Р. 104-109.

30. Surai P.F., Dvorska J.E. Effect of selenium and vitamin E content of the diet on lipid peroxidationin breast muscle tissue of broiler breederhens during storage / P.F. Surai, J.E. Dvorska // Proceedings of Australian Poultry Science Symposium. - 2002. -№ 14. - Р. 187-192.

31. Tilbotson J., Sauberlich H. Effect of riboflavin depletion and repletion on the erythrocyte glutathione reductase in the rat. J. Nutrition. - 1971. - № 101 (11). - Рр. 1459-1466.

32. Turrens J.F. Mitochondrial formation of reactive oxygen species / F. Julio Tur-rens // Affiliations Department of Biomedical Sciences, University of South Alabama, USA. The Physiological Society, 2003. - Р. 1-8.

33. Valko M., Leibfritz D., Moncol J., Cronin M., Mazur M., Telser J. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease // The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 2007. - № 39(1). - Рр. 44-84.