Гистологические исследования листового салата и базилика при инфицировании Ps. Aeruginosa и Ps. Fluorescens в условиях In vitro

При взаимодействии растительных клеток листового салата и базилика с Ps.aeruginosa ATCC B3994 при использовании электронного микроскопа были выявлены деформации клеточной стенки с нарушениями ее целостности, а также обнаружены увеличенного размера хлоропласты сультраструктурными изменениями. Ps.fluorescens АТСС 948 локализовались в цитоплазме и хлоропластах клеток без цитотоксического эффекта. Идентификация выделенных из растений изолятов осуществлялась с помощью окраски по Граму, биохимических тестов и ПЦР. Контаминация зеленных культур, не подвергающихся тепловой обработке вирулентным штаммом Ps. aeruginosa, представляет потенциальную угрозу для здоровья и жизни людей.

Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas fluorescens, зеленные культуры, динамика численности бактерий, фенольные соединения, ультраструктура хлоропластов, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas fluorescens, leaf vegetables, bacterial population dynamics, phenolic compounds, chloroplast ultrastructure

1. Артамонов А.М. Спектр литической активности и специфичность бактериофагов Pseudomonas fluorescens / А.М. Артамонов, Д.А. Викторов, Д.А. Васильев // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: Материалы V Международной научно-практической конференции (Ульяновск, 11 июня 2013 г.) - Ульяновск, 2013. - Т. 2. - С. 3-6.

2. Астахова Н.В. Реорганизация ультраструктуры хлоропластов при низкотемпературном закаливании растений арабидопсиса / Н.В. Астахова, В.Н. Попов, А.А. Селиванов, Е.А. Бураханова, Г.П. Алиева, И.Е. Мошков // Физиология растений. - 2014. - Т. 61. - С. 790-797.

3. Балко А.Б. Формирование биопленки штаммами Pseudomonas aeruginosa Украинской коллекции микроорганизмов / А.Б. Балко, О.И. Балко, Л.В. Авдеева // Микробиологический журнал. - 2013. - T. 75. - № 2. - C. 50-56.

4. Булгаков А.К. Факторы вирулентности и лекарственной устойчивости некоторых представителей семейства Enterobacteriaceae, их чувствительность к новому ряду азотсодержащих гетероциклов: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. - Челябинск, 2000. - 47 с.

5. Бухарин О.В. Патогенные бактерии в природных экосистемах / О.В. Бухарин, В.Ю. Литвин. - Екатеринбург: УрО РНА, 1997. - 277 с.

6. Вертиев Ю.В. Бактериальные токсины: Биологическая сущность и происхождение // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 1996. -Вып. 3. - С. 43-46.

7. Габидова А.Э. Основные начала возникновения резистентности в биосфере / А.Э. Габитова, В.А. Галынкин // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. - 2017. - № 3(1). - C. 92-102.

8. Круглова Н.Н. Каллус как модель для изучения формирования структуры высшего растения // Известия Уфимского научного центра РАН. - 2011. - № 3-4. -С.17-22.

9. Кузнецова M.B. Опыт использования методов молекулярной генетики при идентификации клинических штаммов Pseudomonas aeruginosa // Клиническая лабораторная диагностика. - 2013. - Вып. 3. - С. 34-37.

10. Лабораторный практикум по сельскохозяйственной биотехнологии / Е.А. Калашникова, М.Ю. Чередниченко, Н.П. Карсункина, М.Р. Халилуев. - М.: Изд-во РГАУ-МСХА, 2014. - С. 147.

11. Маркова Ю.А. Растения как экологическая ниша патогенных для человека бактерий / Ю.А. Маркова, А.Л. Турская // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. -2012. - № 84.

12. Медведев С.С. Биология развития растений. Начала биологии развития растений. Фитогормоны: В 2-х т. / С.С. Медведев, Е.И. Шарова // Изд-во Санкт-Петербургского университета, 2011. - Т. 1. - 253 с.

13. Моррисон А.В. Синегнойная инфекция: эффекты экзотоксина А (обзор) / А.В. Моррисон, В.И. Попович, В.В. Моррисон // Саратовский научно-медицинский журнал. - 2014. - Вып. 10(3). - С. 542-546.

14. Овод А.А. Особенности популяционной динамики псевдомонад и листерий в ассоциации с каллусами зеленных культур / А.А. Овод, Г.В. Годова, Е.А. Калашникова // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. - 2017. - № 6. - С. 56-67.

15. Овод А.А. Особенности взаимодействия токсин-продуцирующих Е.сoli c клетками зеленных культур / А.А. Овод, В.И. Пушкарева // Ученые записки Тамбовского отделения РоСМУ - 2016. - № 5. - С. 220-229.

16. Овод А.А. Взаимодействие Listeria monocytogenes c агрокультурами и стадии формирования биопленки / А.А. Овод, В.И. Пушкарева, Г.В. Годова // Концепт: Научно-методический электронный журнал. - 2014. - T. 20. - С. 4846-4850.

17. Пушкарева В.И. Листерии в растениях: экспериментальное изучение колонизации, численности и изменчивости / В.И. Пушкарева, В.Ю. Литвин, В.В. Троицкая // ЖМЭИ. - 1996. - № 5. - С. 10-12.

18. Пушкарева В.И. Взаимодействие Escherichia coli с растениями на популяционном и клеточном уровнях / В.И. Пушкарева, Л.В. Диденко, А.А. Овод, С.А. Ермолаева // Успехи современной биологии. - 2015. - Т. 135. - № 3. С. 297-306.

19. Пушкарева В.И. Listeria monocytogenes - взаимодействие с агрокультурами и стадии формирования биопленки / Л.В. Диденко, Г.В. Годова, А.А. Овод, Е.А. Калашникова, С.А. Ермолаева // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. - 2013. -№ 1. - С. 42-49.

20. Agrios G.N. Plant Pathology // G.N. Agrios. - 5 th ed. - Elsevier Academic Press, 2005. - 922 p.

21. Brandl M.T. Plant lesions promote the rapid multiplication of Escherichia coli O157: H7 on postharvest lettuce // Appl. Environ. Microbiol. - 2008. - Vol. 74(17). - P. 5285-5289.

22. Brandl M.T., Amundson R. Leaf age as a risk factor in contamination of lettuce with Escherichia coli О157: H7 and Salmonella enterica / M.T. Brandl, R. Amundson // Appl. Environ. Microbiol. - 2008. - V. 74(8). - P. 2298-2306.

23. Brandl M.T., Mandrell R.E. Fitness of Salmonella enterica serovar Thompson in the cilantro Phyllosphere // Appl. Environ. Microbiol. - 2002. - Vol. 68. - No 7. -P. 3614-3621.

24. Bari R. Role of plant hormones in plant defence responses / R. Bari, J.D.G. Jones // Plant Mol. Biol., 2009. - Vol. 69. - P. 473-488.

25. Dinu L.D., Bach S. Induction of viable but nonculturable Escherichia coli O157: H7 in the phyllosphere of lettuce: a food safety risk factor // Appl. Environ. Microbiol. -2011. - V. 77(23). - P. 8295-8302.

26. Dong Y., Iniguez A.L., Ahmer B.M. Kinetics and strain specificity of rhizosphere and endophytic colonization by enteric bacteria on seedlings of Medicago sativa and Medicago truncatula // Appl. Environ. Microbiol. - 2003. - V. 69(3). - P. 1783-1790.

27. Goldberg J.B., Hancock R.E.W., Parales R.E., Loper J., Cornelis P Pseudomonas 2007 // J. Bacteriology, 2008. - № 190(8). - P. 2649-2662.

28. Lv, L., Jiang T., Zhang S., Yu, X. Exposure to mutagenic disinfection byproducts leads to increase of antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa // Environ Sci. Technol., 2014. - № 48(14). - P. 8188-8195.

29. Ovod A.A., Pushkareva V.I., Godova G.V., Ermolaeva S.A. Vegetable crops as a model for studying polyhostality Listeria monocytogenes // European Innovation Convention. The 1st International scientific conference proceedings (December 20-21, 2013). - «East West» Association for Advanced Studies and Higher Education GmbH. Viena, 2013. - Pp. 105-112.

30. Robert-Seilaniantz A. Pathological hormone imbalances / A. Robert-Seilaniantz L. Navarro, R. Bari J.D.G Jones // Current Opinion in Plant Biology. - 2007. - Vol. 10. - P. 372-379.

31. Sabatini D.D., Bensch K., Barmett R.J. Chytochemistry and electron microscopy - the preservation of cellular ultrastructure and enzymatic activity by aldehyde fixation // J. of Cell Biology. - 1963. - V. 1. - P. 16-58.

32. Traits of Fluorescent Pseudomonas spp. involved in suppression of Plant Root Pathogens / Daniel J. O’Sullivan, Fergal O’Gara // Microbiol. Rev. - 1992. - Vol. 56. - P. 662-676.

33. Whiteley M., Bangera M.G., Bumgarner R.E., Parsek M.R., Teitzel G.M., Lory S., Greenberg E.P. Gene expression in Pseudomonas aeruginosa biofilms // Nature. - 2001. - P. 413:860-864.