К вопросу генетического улучшения плодовитости овец

Большинство пород овец являются малоплодными, что наряду с другими причинами приводит к низкой рентабельности отрасли. В интенсивных системах промышленного овцеводства высокая плодовитость овец может повысить эффективность производства продукции овцеводства. Скрещивание малоплодных пород с многоплодными породами было основным средством генетического улучшения плодовитости, в то время как внутрипородный отбор считался относительно неэффективным по причине низкой наследуемости признака. Мутации, достоверно влияющие на скорость овуляции и, следовательно, на количество ягнят, были обнаружены у нескольких пород по всему миру в генах, обозначенных как «основные гены» плодовитости. Большинство этих мутаций картируется в генах, связанных с суперсемейством TGFβ. Генотипирование по этим основным генам позволяет применять метод селекции с помощью маркеров для скрещиваний с целью интрогрессии полезных мутаций в новые породы. Анализ митохондриальной ДНК, полногеномные ассоциативные исследования (GWAS), секвенирование всего генома, анализ транскриптома и протеомные исследования овец с высокой и низкой многоплодностью выявили дополнительные генетические вариации со средним или незначительным влиянием на плодовитость. Использование информации о полиморфизме в этих «средних» и «второстепенных» генах может облегчить селекционную работу на более высокую плодовитость в рамках конкретной производственной системы. Несмотря на то, что высокая плодовитость может быть связана с риском токсикоза беременности у овец, увеличением эмбриональной смертности, уменьшением сохранности ягнят в раннем постнатальном онтогенезе, а также с высоким риском сокращения продуктивного долголетия овец, перспектива заключается в том, чтобы идентифицировать набор генов с умеренным влиянием на плодовитость.

1. Айбазов А.-М.М., Мамонтова Т.В. Эффективное воспроизводство овец и коз: Монография. - Ставрополь: «Ставрополь-Сервис-Школа», 2020. - 212 с.

2. Дейкин А.В., Селионова М.И., Криворучко А.Ю., Коваленко Д.В., Трухачев В.И. Генетические маркеры в мясном овцеводстве // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2016. - Т. 20, № 5. - С. 576-583. https://doi.org/10.18699/VJ16.139.

3. Марзанов Н.С., Малюченко О.П., Корецкая Е.А., Марзанова С.Н., Марзанова Л.К., Тимошенко Ю.И., Файзуллаев Ф.Р. Характеристика романовской породы по локусу BMP-15, ответственному за многоплодие овец // Российская сельскохозяйственная наука. - 2019. - № 3. - Pp. 47-50. https://doi.org/10.31857/S2500-26272019347-50.

4. Трухачев В.И., Селионова М.И., Криворучко А.Ю., Айбазов А.М.М. Генетические маркеры мясной продуктивности овец (Ovis aries L.). Сообщение I. Миостатин, кальпаин, кальпастатин // Сельскохозяйственная биология. - 2018. - Т. 53, № 6. - С. 1107-1119. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.6.1107rus.

5. Abdoli R., Mirhoseini S.Z., Ghavi Hossein-Zadeh N., Zamani P., Ferdosi M.H., Gondro C. Genome-wide association study of four composite reproductive traits in Iranian fat-tailed sheep // Reprod. Fertil. Dev. - 2019. - № 31. - Pp. 1127-1133. https://doi.org/10.1071/RD18282.

6. Aboul-Naga A.M. Finnsheep and their crosses under subtropical conditions // Agric. Food Sci. - 1988. - № 60. - Pp. 473-480. https://doi.org/10.23986/afsci.72323.

7. Ap Dewi I., Owen J.B., El-Sheikh A., Axford R.F.E., Beigi-Nassiri M. Variation in ovulation rate and litter size of Cambridge sheep // Animal Science. - 1996. - № 62. - Pp. 489-494. https://doi.org/10.1017/S1357729800015022.

8. Bolormaa S., Brown D.J., Swan A.A., van der Werf J.H.J., Hayes B.J., Daetwyler H.D. Genomic prediction of reproduction traits for Merino sheep // Anim. Genet. - 2017. - № 48. - Pp. 338-348. https://doi.org/10.1111/age.12541.

9. Boylan W. Crossbreeding for fecundity // Land R., Robinson D. (Eds.). Genetics of Reproduction in Sheep. - Butterwoorth, London, UK. - 1985. - Pp. 19-24.

10. Butterworths Kenyon P.R., Roca Fraga F.J., Blumer S., Thompson A.N. Triplet lambs and their dams-a review of current knowledge and management systems // New Zeal. J. Agric. Res. - 2019. - № 62. - Pp. 399-437. https://doi.org/10.1080/00288233.2019.1616568.

11. Byrne T.J., Ludemann C.I., Amer P.R., Young M.J. Broadening breeding objectives for maternal and terminal sheep // Livest. Sci. - 2012. - № 144. - Pp. 20-36. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2011.10.010.

12. Carlson D.F., Lancto C.A., Zang B., Kim E. - S., Walton M., Oldeschulte D., Seabury C., Sonstegard T.S., Fahrenkrug S.C. Production of hornless dairy cattle from genome-edited cell lines // Nat. Biotechnol. - 2016. - № 34. - Pp. 479-481. https://doi.org/10.1038/nbt.3560.

13. Chaudhari A., Ramanujam R., Ragothaman V. Effect of Booroola fecundity (FeCB) gene on litter size and scope for use in restoration of Nilagiri sheep from threatened status // Rev. Agrária Acadêmica. - 2019. - № 2. - Pp. 11-16.

14. Chen H.Y., Shen H., Jia B., Zhang Y.S., Wang X.H., Zeng X.C. Differential gene expression in ovaries of Qira black sheep and Hetian sheep using RNA-Seq technique // PLoS One. - 2015. - № 10. - Р. e0120170. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120170.

15. Chen X., Wang D., Xiang H., Dun W., Brahi D.O.H., Yin T., Zhao X. Mitochondrial DNA T7719G in tRNA-Lys gene affects litter size in Small-tailed Han sheep // J. Anim. Sci. Biotechnol. - 2017. - № 8. - P. 31. https://doi.org/10.1186/s40104-017-0160-x.

16. Chong Y., Liu G., Jiang X. Effect of BMPRIB gene on litter size of sheep in China: a meta-analysis // Anim. Reprod. Sci. - 2019. - № 210. - P. 106175. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.106175.

17. Dash S., Maity A., Bisoi P.C., Palai T.K., Polley S., Mukherjee A., De S. Coexistence of polymorphism in fecundity genes bmpr 1b and gdf 9 of indian kendrapada sheep // Explor Anim. Med. - Res. - 2017. - № 7. - Pp. 33-38.

18. Davis G.H. Major genes affecting ovulation rate in sheep // Genet. Sel. Evol. - 2005. - № 37. - Pp. 11-23. https://doi.org/10.1051/gse:2004026.

19. Davis G.H., Galloway S.M., Ross I.K., Gregan S.M., Ward J., Nimbkar B.V., Ghalsasi P.M., Nimbkar C., Gray G.D., Subandriyo Inounu I., Tiesnamurti B., Martyniuk E., Eythorsdottir E., Mulsant P., Lecerf F., Hanrahan J.P., Bradford G.E., Wilson T. DNA tests in prolific sheep from eight countries provide new evidence on origin of the booroola (FecB) mutation // Biol. Reprod. - 2002. - № 66. - Pp. 1869-1874. https://doi.org/10.1095/biolreprod66.6.1869.

20. Dinçel D., Ardiçli S., Şamli H., Balci F. Genotype frequency of FecXB (Belclare) mutation of BMP15 gene in Chios (Sakiz) sheep. Uludağ Üniversitesi Vet // Fakültesi Derg. - 2018. - № 37. - Pp. 1-5. https://doi.org/10.30782/uluvfd.413857.

21. Drouilhet L., Mansanet C., Sarry J., Tabet K., Bardou P., Woloszyn F., Lluch J., Harichaux G., Viguié C., Monniaux D., Bodin L., Mulsant P., Fabre S. The highly prolific phenotype of lacaune sheep is associated with an ectopic expression of the B4GALNT2 gene within the ovary // PLoS Genet. - 2013. - № 9. - Р. e1003809. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1003809.

22. Dwyer C.M., Conington J., Corbiere F., Holmøy I.H., Muri K., Nowak R., Rooke J., Vipond J., Gautier J.M. Invited review: improving neonatal survival in small ruminants: science into practice // Animal. - 2016. - № 10. - Pp. 449-459. https://doi.org/10.1017/S1751731115001974.

23. Fahmy M.H., Davis G.H. Breeds with newly discovered genes for prolificacy // Fahmy M.H. (ed.): Prolific Sheep. - CAB International, Wallingford, UK, 1996. - Pp. 174-177.

24. FAOSTAT, 2021. http://www.fao.org/faostat/en/#data/QL. Accessed 31 March 2023.

25. Fariello M. - I., Servin B., Tosser-Klopp G., Rupp R., Moreno C., Cristobal M.S., Boitard S. Selection signatures in worldwide sheep populations // PLoS One. - 2014. - № 9. - Р. e103813. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0103813.

26. Fogarty N.M. A review of the effects of the Booroola gene (FecB) on sheep production // Small Rumin. Res. - 2009. - № 85. - Pp. 75-84. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2009. 08.003.

27. Garel M., Cugnasse J.M., Gaillard J.M., LoisonA., Gibert P., Douvre P., Dubray D. Reproductive output of female mouflon (Ovis gmelini musimon × Ovis sp.): a comparative analysis // J. Zool. - 2005. - № 266. - Pp. 65-71. https://doi.org/10.1017/S0952836905006667.

28. Gates P.J., Urioste J.I. Heritability and sire genetic trend for litter size in Swedish sheep estimated with linear and threshold models // Acta Agric. Scand. Sect. A-Anim. Sci. - 1995. - № 45 (4). - Pp. 228-235. https://doi.org/10.1080/09064709509413081.

29. Gelinsky E., Hilbeck A. European Court of Justice ruling regarding new genetic engineering methods scientifically justified: a commentary on the biased reporting about the recent ruling // Environ. Sci. Eur. - 2018. - № 30 (1). - Pp. 52. https://doi.org/10.1186/s12302-018-0182-9.

30. Gholizadeh M., Rahimi-Mianji G., Nejati-Javaremi A., De Koning D.J., Jonas E. Genomewide association study to detect QTL for twinning rate in Baluchi sheep // J. Genet. - 2014. - № 93. - Pp. 489-493. https://doi.org/10.1007/s12041-014-0372-1.

31. Gootwine E. Meta-analysis of morphometric parameters of late-gestation fetal sheep developed under natural and artificial constraints // J. Anim. Sci. - 2013. - № 91 (1). - Pp. 111-119. https://doi.org/10.2527/jas.2013-5363.

32. Gootwine E. Mini review: breeding Awassi and Assaf sheep for diverse management conditions // Trop. Anim. Health Prod. - 2011. - № 43. - Pp. 1289-1296. https://doi.org/10.1007/s11250-011-9852-y.

33. Gootwine E., Goot H. Lamb and milk production of Awassi and East-Friesian sheep and their crosses under Mediterranean environment // Small Ruminant Research. - 1996. - № 20. - Pp. 255-260. https://doi.org/10.1016/0921-4488(95)00807-1.

34. Heaton M.P., Smith T.P.L., Freking B.A., Workman A.M., Bennett G.L., Carnahan J.K., Kalbfleisch T.S. Using sheep genomes from diverse U.S. Breeds to identify missense variants in genes affecting fecundity // F1000Research. - 2017. - № 6. - P. 1303. https://doi.org/10.12688/f1000research.12216.1.

35. Jia J., Chen Q., Gui L., Jin J., Li Y., Ru Q., Hou S. Association of polymorphisms in bone morphogenetic protein receptor-1B gene exon-9 with litter size in Dorset, Mongolian, and Small Tail Han ewes // Asian-Australasian J. Anim. Sci. - 2019. - № 32. - Pp. 949-955. https://doi.org/10.5713/ajas.18.0541.

36. Kijas J.W., Lenstra J.A., Hayes B., Boitard S., Porto Neto L.R., San Cristobal M., Servin B., McCulloch R., Whan V., Gietzen K., Paiva S., Barendse W., Ciani E., Raadsma H., McEwan J., Dalrymple B. Genome-wide analysis of the world’s sheep breeds reveals high levels of historic mixture and strong recent selection // PLoS Biol. - 2012. - № 10. - Р. e1001258. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1001258.

37. La Y., Liu Q., Zhang L., Chu M. Single nucleotide polymorphisms in SLC5A1, CCNA1, and ABCC1 and the association with litter size in small-tail Han sheep // Animals. - 2019. - № 9. - P. 432. https://doi.org/10.3390/ani9070432.

38. La Y., Tang J., Guo X., Zhang L., Gan S., Zhang X., Zhang J., Hu W., Chu M. Proteomic analysis of sheep uterus reveals its role in prolificacy // J. Proteomics. - 2020. - № 210. - P. 103526. https://doi.org/10.1016/j.jprot.2019.103526.

39. Lassoued N., Benkhlil Z., Woloszyn F., Rejeb A., Aouina M., Rekik M., Fabre S., Bedhiaf-Romdhani S. FecX Bar a Novel BMP15 mutation responsible for prolificacy and female sterility in Tunisian Barbarine Sheep // BMC Genet. - 2017. - № 18. - P. 43. https://doi.org/10.1186/s12863-017-0510-x.

40. Lv F.H., Agha S., Kantanen J., Colli L., Stucki S., Kijas J.W., Joost S., Li M.H., Marsan P.A. Adaptations to climate-mediated selective pressures in sheep // Mol. Biol. Evol. - 2014. - № 31. - Pp. 3324-3343. https://doi.org/10.1093/molbev/msu264.

41. Ma H., Fang C., Liu L., Wang Q., Aniwashi J., Sulaiman Y., Abudilaheman K., Liu W. Identification of novel genes associated with litter size of indigenous sheep population in Xinjiang, China using specific-locus amplified fragment sequencing technology // Peer J. - 2019. - № 7. - Р. e8079. https://doi.org/10.7717/peerj.8079.

42. Martin P., Raoul J., Bodin L. Effects of the FecL major gene in the Lacaune meat sheep population // Genet. Sel. Evol. - 2014. - № 46. - P. 48. https://doi.org/10.1186/1297-9686-46-48.

43. McNatty K.P., Heath D.A., Clark Z., Reader K., Juengel J.L., Pitman J.L. Ovarian characteristics in sheep with multiple fecundity genes // Reproduction. - 2017. - № 153. - Pp. 233-240. https://doi.org/10.1530/REP-16-0587.

44. Meadows J.R.S., Cemal I., Karaca O., Gootwine E., Kijas J.W. Five ovine mitochondrial lineages identified from sheep breeds of the near east // Genetics. - 2007. - № 175. - Pp. 1371-1379. https://doi.org/10.1534/genetics.106.068353.

45. Menéndez Buxadera A., Alexandre G., Mandonnet N. Discussion on the importance, definition and genetic components of the number of animals born in the litter with particular emphasis on small ruminants in tropical conditions // Small Rumin. Res. - 2004. - № 54. - Pp. 1-11. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2003.10.007.

46. Miao X., Luo Q., Zhao H., Qin X. Ovarian proteomic study reveals the possible molecular mechanism for hyper prolificacy of Small Tail Han sheep // Sci. Rep. - 2016. - № 6. - P. 27606. https://doi.org/10.1038/srep27606.

47. Miao X., Luo Q., Zhao H., Qin X. Ovarian transcriptomic analysis reveals the alternative splicing events associated with fecundity in different sheep breeds // Anim. Reprod. Sci. - 2018. - № 198. - Pp. 177-183. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.09.017.

48. Nicol L., Bishop S.C., Pong-Wong R., Bendixen C., Holm L.E., Rhind S.M., Mc- Neilly A.S. Homozygosity for a single base-pair mutation in the oocyte-specific GDF9 gene results in sterility in Thoka sheep // Reproduction. - 2009. - № 138. - Pp. 921-933. https://doi.org/10.1530/REP-09-0193.

49. Nosrati M., Asadollahpour Nanaei H., Amiri Ghanatsaman Z., Esmailizadeh A. Whole genome sequence analysis to detect signatures of positive selection for high fecundity in sheep // Reprod. Domest. Anim. - 2019. - № 54. - Pp. 358-364. https://doi.org/10.1111/rda.13368.

50. Notter D.R. Genetic aspects of reproduction in sheep // Reprod. Domest. Anim. - 2008 - № 2. - Pp. 122-128. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01151.x.

51. Piper L.R., Bindon B.M., Davis G.H. The single gene inheritance of the high litter size of the booroola merino // Land R.B., Robinson D.W. (Eds.). Genetics of Reproduction in Sheep. Butterworths, London - Elsevier. - 1985. - Pp. 115-125. https://doi.org/10.1016/B978-0-407-00302-6.50016-7.

52. Pokharel K., Peippo J., Honkatukia M., Seppälä A., Rautiainen J., Ghanem N., Hamama T.M., Crowe M.A., Andersson M., Li M.H., Kantanen J. Integrated ovarian mRNA and miRNA transcriptome profiling characterizes the genetic basis of prolificacy traits in sheep (Ovis aries) // BMC Genomics. - 2018. - № 19. - Pp. 1-17. https://doi.org/10.1186/s12864-017-4400-4.

53. Praveena K., Ramana D.B.V., Pankaj P.K. Booroola Gene (FecB) Polymorphism and its Liaison with Litter Size in Indigenous Sheep Breeds of Telangana, India // J. Anim. Res. - 2017. - № 7. - Pp. 227-231. https://doi.org/10.5958/2277-940X.2017.00034.1.

54. Raoul J., Palhière I., Astruc J.M., Swan A., Elsen J.M. Optimal mating strategies to manage a heterozygous advantage major gene in sheep // Animal. - 2018. - № 12. - Pp. 454-463. https://doi.org/10.1017/S1751731117001835.

55. Razungles J., Tchamitchian L., Bibe B., Lefevre C., Brunel J., Ricordeau G. The performance of Romanov crosses and their merits as a basis for selection // Land R., Robinson D. (Eds.). Genetics of Reproduction in Sheep. Butterworths, London - Elsevier. - 1985. - Pp. 39-45.

56. Reicher S., Gertler A., Seroussi E., Shpilman M., Gootwine E. Biochemical and in vitro biological significance of natural sequence variation in the ovine leptin gene // Gen. Comp. Endocrinol. - 2011. - № 173. - Pp. 63-71. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2011.04.030.

57. Ruan J., Xu J., Chen-Tsai R.Y., Li K. Genome editing in livestock: Are we ready for a revolution in animal breeding industry? // Transgenic Res. - 2017. - № 26. - Pp. 715-726. https://doi.org/10.1007/s11248-017-0049-7.

58. Rummel T., Valle Zàrate A., Gootwine E. The world wide gene flow of the improved awasi and assaf sheep breeds from Israel // Gene Flow in Animal Genetic Resources: A Study on Status, Impact and Trends. GTZ, BMZ. - 2006. - Pp. 305-358.

59. Safari E., Fogarty N.M., Gilmour A.R. A review of genetic parameter estimates for wool, growth, meat and reproduction traits in sheep // Livest. Prod. Sci. - 2005. - № 92. - Pp. 271-289. https://doi.org/10.1016/j.livprodsci.2004.09.003.

60. San Cristobal-Gaudy M., Bodin L., Elsen J. - M., Chevalet C. Genetic components of litter size variability in sheep // Genet. Sel. Evol. - 2001. - № 33. - P. 249. https://doi.org/10.1186/1297-9686-33-3-249.

61. Sinclair K.D., Rutherford K.M.D., Wallace J.M., Brameld J.M., Stöger R., Alberio R., Sweetman D., Gardner D.S., Perry V.E.A., Adam C.L., Ashworth C.J., Robinson J.E., Dwyer C.M. Epigenetics and developmental programming of welfare and production traits in farm animals // Reprod. Fertil. Dev. - 2016. - № 28. - Pp. 1443-1478. https://doi.org/10.1071/RD16102.

62. Souza C.J.H., McNeilly A.S., Benavides M.V., Melo E.O., Moraes J.C.F. Mutation in the protease cleavage site of GDF9 increases ovulation rate and litter size in heterozygous ewes and causes infertility in homozygous ewes // Anim. Genet. - 2014. - № 45. - Pp. 732-739. https://doi.org/10.1111/age.12190.

63. Talebi R., Ahmadi A., Afraz F., Sarry J., Woloszyn F., Fabre S. Detection of single nucleotide polymorphisms at major prolificacy genes in the Mehraban sheep and association with litter size // Ann. Anim. Sci. - 2018. - № 18. - Pp. 685-698. https://doi.org/10.2478/aoas-2018-0014.

64. Thomas D.L. Performance and utilization of Northern European short-tailed breeds of sheep and their crosses in North America: a review // Animal. - 2010. - № 4. - Pp. 1283-1296. https://doi.org/10.1017/S1751731110000856.

65. Tian Z.L., Tang J.S., Sun Q., Wang Y.Q., Zhang X.S., Zhang J.L., Chu M.X. Tissue expression and polymorphism of sheep SmaD1 gene and their association with litter size // Sci. Agric. Sin. - 2019. - № 52. - Pp. 755-766. https://doi.org/10.3864/j.issn.0578-1752. 2019.04.015.

66. Trukhachev V., Skripkin V., Kvochko A., Yatsyk O., Krivoruchko A., Kulichenko A., Kovalev D., Pisarenko S., Volynkina A., Selionova M., Aybazov M., Shumaenko S., Omarov A., Mamontova T. Polymorphisms of the IGF1 gene in Russian sheep breeds and their influence on some meat production parameters // Slovenian Veterinary Research. - 2016. - № 53 (2). - Pp. 77-83. EDN XFOXBX.

67. Vera M., Aguion M., Bouza C. Detection of grivette BMP15 prolificacy variant (FecX) in different sheep breeds presented in Galicia (NW Spain) // Gene Rep. - 2018. - № 12. - Pp. 109-114. https://doi.org/10.1016/j.genrep.2018.06.008.

68. Wang D., Ning C., Xiang H., Zheng X., Kong M., Yin T., Liu J., Zhao X. Polymorphism of mitochondrial tRNA genes associated with the number of pigs born alive // J. Anim. Sci. Biotechnol. - 2018. - № 9. - P. 86. https://doi.org/10.1186/s40104-018-0299-0.

69. Wilson T., Wu X. - Y., Juengel J.L., Ross I.K., Lumsden J.M., Lord E.A., Dodds K.G., Walling G.A., Mc Ewan J.C., O’Connell A.R., McNatty K.P., Montgomery G.W. Highly prolific booroola sheep have a mutation in the intracellular kinase domain of bone morphogenetic protein IB receptor (ALK-6) that is expressed in both oocytes and granulosa cells1 // Biol. Reprod. - 2001. - № 64. - Pp. 1225-1235. https://doi.org/10.1095/biolreprod64.4.1225.

70. Wolfová M., Wolf J., Krupová Z., Margetín M. Estimation of economic values for traits of dairy sheep: II. Model application to a production system with one lambing per year // J. Dairy Sci. - 2009. - № 92. - Pp. 2195-2203. https://doi.org/10.3168/jds.2008-1412.

71. Wu G., Bazer F.W., Satterfield M.C., Li X., Wang X., Johnson G.A., Burghardt R.C., Dai Z., Wang J., Wu Z. Impacts of arginine nutrition on embryonic and fetal development in mammals // Amino Acids. - 2013. - № 45 (2). - Pp. 241-256. https://doi.org/10.1007/s00726-013-1515-z.

72. Xu S.S., Gao L., Xie X.L., Ren Y.L., Shen Z.Q., Wang F., Shen M., Eypórsdóttir E., Hallsson J.H., Kiseleva T., Kantanen J., Li M.H. Genome-wide association analyses highlight the potential for different genetic mechanisms for litter size among sheep breeds // Front. Genet. - 2018. - № 9. - Pp. 1-14. https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00118.

73. Yu G., Xiang H., Tian J., Yin J., Pinkert C.A., Li Q., Zhao X. Mitochondrial haplotypes influence metabolic traits in porcine transmitochondrial cybrids // Sci. Rep. - 2015. - № 5. - P. 13118. https://doi.org/10.1038/srep13118.

74. Zamir S., Rozov A., Gootwine E. Treatment of pregnancy toxaemia in sheep with flunixin meglumine // Vet. Rec. - 2009. - № 165. - Pp. 265-266. https://doi.org/10.1136/vr.165.9.265.

75. Zheng J., Wang Z., Yang H., Yao X., Yang P., Ren C.F., Wang F., Zhang Y.L. Pituitary transcriptomic study reveals the differential regulation of lncRNAs and mRNAs related to prolificacy in different FecB genotyping sheep // Genes (Basel). - 2019. - № 10. - Pp. 1-17 https://doi.org/10.3390/genes10020157.

76. Zhou M., Pan Z., Cao X., Gu X., He X., Sun Q., Di R., Hu W., Wang X., Zhang X., Zhang J., Zhang C., Liu Q., Chu M. Single nucleotide polymorphisms in the HIRA gene affect litter size in Small Tail Han sheep // Animals. - 2018. - № 8. - P. 71. https://doi.org/10.3390/ani8050071.

77. Zhou S., Yu H., Zhao X., Cai B., Ding Q., Huang Y., Li Yaxin, Li Yan, Niu Y., Lei A., Kou Q., Huang X., Petersen B., Ma B., Chen Y., Wang X. Generation of gene-edited sheep with a defined Booroola fecundity gene (FecBB) mutation in bone morphogenetic protein receptor type 1B (BMPR1B) via clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR)/CRISPR-associated (Cas) 9 // Reprod. Fertil. Dev. - 2018. - № 30. - Pp. 1616-1621. https://doi.org/10.1071/RD18086.