Изучение эффективности новых питательных сред для производства растений земляники in vitro

Тенденции развития отрасли садоводства показали, что для удовлетворения потребности населения России плодами и ягодами необходимо расширение насаждений этих культур. Клональное микроразмножение – современный способ массового ускоренного вегетативного размножения растений, который широко применяется при производстве отечественного посадочного материала садовых растений. Однако с учетом того, что большинство применяемых сегодня в практике клонального микроразмножения питательных сред было создано в 70–80-е гг. XX в., возникает необходимость совершенствования оптимального состава питательной среды. В связи с этим цель работы заключалась в исследовании влияния замены неорганических солей всех микроэлементов, входящих в состав питательной среды, на комплексонаты микрэлементов с карбоксилсодержащим лигандом – EDTA. Сравнительная оценка изучаемых питательных сред показала значительное преимущество регенерационной способности растений всех сортов земляники на модифицированной питательной среде № 1, где отклонение коэффициентов размножения опытных вариантов от контроля составило 0,6–1,8 ед. на втором пассаже и 0,9–2,9 ед. – на третьем. На этапе ризогенеза у опытных микрорастений земляники четко прослеживалась большая чувствительность к питательной среде, и на 28-е сутки субкультивирования укореняемость микророзеток превышала аналогичные показатели контроля на 6,2–25,0%.

1. Высоцкий В.А. Биотехнологические методы в современном садоводстве // Плодоводство и ягодо водство России. – Т. XXVI. – Изд-во ВСТИСП, 2011. – С. 3–10.

2. Карпушина М.В., Винтер М.А. Микроклональное размножение земляники садовой // Научные труды Северо-Кавказского федерального научн ого центра садоводства, виноградарства, виноделия. – 2021. – Т. 31. – С. 108–113.

3. Семенас С.Э., Кухарчик Н.В. Методика клонального микроразмножения сортов земляники // Плодоводство: Сборник научных трудов Белорусского НИИП. – Т. XIII. – Самохваловичи, 2000. – С. 138–145.

4. Яковенко В.В., Лапшин В.И. Сорта земляники для эко логического изучения в зоне Северного Кавказа // Научные труды СКФНЦСВВ. – Т. 1 4. – Краснодар: СКФНЦСВВ, 2018. – С. 147–154.

5. Козий И.И. Производство ягод в России в цифрах // Ягоды России. – 2020. – № 1. – С. 3–4.

6. Мацнева О.В., Ташмат ова Л.В., Орлова Н.Ю., Шахов В.В. Микроклональное размножение земляники садовой // Селекция и сорторазведение садовых культур. – 2017. – Т. 4, № 1–2. – С. 93–96.

7. Мацнева О.В., Ташматова Л.В., Д жафарова В.Е. Пролиферативная активность сортов земляники садовой в культуре in vitro // Современное садоводство. – 2016. – № 1. – [Электронный ресурс]. – URL: http://journal.vniispk.ru/pdf/2016/1/12.pdf.

8. Баматов И.М., Адаев Н.Л., Цагараева Э.А. , Таймасханов Х.Э., Амаева А.Г. Повышение эффективности технологии оздоровления и первичного размножения земляники садовой в культуре in vit ro // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2020. – Т. 57, № 4. – С. 183–191.

9. Белошапкина О.О., Батрак Е.Р., Ханжиян И.И. Здоровый посадочный материал земляники – основы успеха // Защита и карантин расте ний. – 2001. – № 8. – С. 23.

10. Московенко Н.В., Тихонов С.Л., Степанов В.В. Сравнительная характеристика показателей качества клубники, выращенной в естественных условиях и пр и микроклональном культивировании // Товаровед продовольственных товаров. – 2013. – № 11. – С. 4–10.

11. Акимова С.В., Викулина А.Н., Буянов И.Н., Глинушкин А.П. Совершенствование способов подг отовки микрорастений малины к адаптации // Плодоводство и ягодоводство России. – 2014. – Т. 39. – С. 16–19

12. Джигадло Е.Н., Джига дло М.И., Голышкина А.В. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами. – Орел: ВНИИСПК, 2005. – 49 с.

13. Атрощенко Г.П., Костицын В.В., Неделюев А.А. Рекомендации по производству оздоровленного посадочного материала земляники. – СПб., 2001. – 14 с.

14. Матушкина О.В., Пронина И.Н. Технология клонального микроразмножения яблони и груши: Методические рекомендации. – Мичуринск-наукоград РФ, 2008. – 32 с.

15. Кухарчик Н.В. Размножение плодовых растений в культуре in vitro / Под общ. ред. Н.В. Кухарчик. – Минск: Беларуская навука, 2016. – 208 с.

16. Mayer N.A., Bianchi V.J., Feldberg N.P., Morini S. Rev. Bras. Frutic. V. 39, n 4. Advances in peach, nectarine and plum propagation p. 355 Mayer N.A. Advances in peach, nectarine and plum propagation // Rev. Bras. Frutic. – 2017. – V. 39. – № 4. – Рр. 355.

17. Niedz R.P., Evens T.J. Regulating plant tissue growth by mineral nutrition // In Vitro Cell Dev Biol-Plant. – 2007. – V. 43. – Рр. 370–381.

18. Reed B.M., Wada S., DeNoma J., Niedz R.P. Mineral nutrition influences physiological responses of pear in vitro // In Vitro Cell. Dev. Biol-Plant. – 2013. – V. 49. – Рp. 699–709.

19. Ramage C.M., Williams R.R., Mineral nutrition and plant morphogenesis / C.M. Ramage, R.R. Williams // In Vitro Cell Dev Biol-Plant. – V. 38. – Pр. 116–124.

20. Greenway M.B. A nutrient medium for diverse applications and tissue growth of plant species in vitro / M.B. Greenway, I.C. Phillips, M.N. Lloyd, J.F. Hubstenberger, G.C. Phillips // In Vitro Cell Dev Biol-Plant. – 2012. – V. 48. – Р. 403–410.

21. George E.F. The components of plant tissue culture media I: macroand micro-nutrients / E.F. George, M.A. Hall, De Klerk (Eds.) // Plant Propagation by Tissue Culture., 3rd ed. Springer. – New York, ГОД. – Рр. 65–113.

22. Hand C. Minor nutrients are critical for the improved growth of Corylus avellana shoot cultures / C. Hand, B.M. Reed // Plant Cell Tiss Organ Cult. – 2014. – V. 119. – Рр. 427–439.

23. Garrison W. Improved shoot multiplication and development in hybrid hazelnut nodal cultures by ethylenediamine di-2-hydroxy-phenylacetic acid (Fe-EDDHA / W. Garrison, A. Dale, P. Saxena // Can. J. Plant Sci. – 2013. – 93:511–521.

24. Jolley V.D. Plant Physiological Responses for Genotypic Evaluation of Iron Efficiency in Strategy I and Strategy II Plants-A Review / V.D. Jolley, K.A. Cook, N.C. Hansen, W.B. Stevens // Journal of plant nutrition. – 1996. – V. 19. – Рр. 1241–1255.

25. Mo lassiotis A.N. Fe-EDDHA promotes rooting of rootstock GF-677 (Prunus amygdalus 9 P. persica) explants in vitro / A.N. Molassiotis, K. Dimassi, I. Therios, G. Diamantidis // Biol. Pl ant. – 20004. – V. 1. – Рр. 141–144.

26. Padmanabhan P. Iron supplementation promotes in vitro shoot induction and multipl ication of Baptisia australis / P. Padmanabhan, M.R. Shukla, J.A. Sullivan, P.K. Saxena // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 2017. – V. 129. – Рр. 145–152.

27. Van der Salm T.P.M. Importance of the iron chelate for micropropagation of Rosa hybrida L. ‘ Moneyway’ / Van der Salm T.P.M., Van der Toorn C.J.G., Hanish ten Cate C.H., Dubois L.A.M., De Vries D.P., Dons H.J.M. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 1994. – V. 37. – Рp. 73–77.

28. Andres H. Phytohormone contents in Corylus avellana and their relationship to age and other developmental processes / H. Andres, B. Fernandez, R. Rodriguez, A. Rodriguez // Plant Cell Tiss Organ Cult 70. – 2002. – Рр. 173–180.

29. Perez-Tornero O. Effect of basal media and growth regulators on the in vitro propagation of apricot (Prunus armenica L.) cv. Canino / O. Perez-Tornero J.М. Lopez, J. Egea, L. Burgos // Journal of Horticultural Science & Biotechnology. – 2000. – V. 75 (3). – Рp. 283–286.

30. Damiano C. Propagation of Prunus and Malus by temporary immersion / C. Damiano, La Starza S.R., Monticelli S., Gentile A., Caboni E., Frattarelli A. // HVOSLEF-EIDE A.K. AND PREIL W. (Ed.). Liquid culture systems for in vitro plant propagation. – Netherlands: Springer, 2005. – Рр. 243–251.

31. Zawadzka M. Fruit ornamental Plant Res Factors modifying regeneration in vitro of adventitious shoots in five red raspberry cultivars / M. Zawadzka, T. Orlikowska. – 2006. – Vol. 14. – Рp. 105–115.

32. Wada S. Mesos components (CaCl2, MgSO4, KH2PO4) are critical for improving pear micropropagation / S. Wada, R.P. Niedz, J. DeNoma B.M. Reed // In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant. – 2013. – V. 49 – Рp. 356–365.

33. Poothonga S. Modeling the effects of mineral nutrition for improving growth and development of micropropagated red raspberries / S. Poothonga, B.M. Reed // Scientia Horticulturae. – 2014. – V. 165. – Pр. 132–141.

34. Carvalhoa A.A. Mesos components (CaCl2, MgSO4, KH2PO4) induced changes in growth and ascaridole content of Dysphania ambrosioides L. in vitro / A.A. Carvalhoa S.K.V.B. Bertoluccia G.M. Silva S.H.B. Cunhaa H.L.H.R. Rozaa S. Aazzab J.E.B.P Pinto // Industrial Crops & Products. – 2018 . – V. 122. – Рр. 28–36.

35. Битюцкий Н.П. Микроэлементы высших растений. – СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского университета, 2011. – 368 с.

36. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. – 1962. – V. 1 5. – Рр. 437–497.

37. ГОСТ Р 54051–2010 «Плодовые и ягодные культуры. Стерильные культуры и адаптированные микрорастения. Технические условия». – 15 с.

38. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований): Учебник для студентов высших сельскохозяйственных учебных заведений по агрономическ им специальностям. – Изд. 6-е, стер., перепеч. с 5-го изд. 1985 г. – М.: Альянс, 2011. – 350 с.

39. Исачкин А.В., Крючкова В.А. Основы научных исследований в садов одстве: Учебник для вузов / Под ред. А.В. Исачкина. – СПб.: Лань, 2020. – 420 с.