Влияние пробиотика «Энзимспорин» на морфофизиологические показатели гибрида ленского осетра и белуги при выращивании в аквакультуре

Для устойчивого роста, повышения резистентности и эффективности усвоения корма целесообразным является применение пробиотиков. В настоящее время существуют коммерческие пробиотические продукты, приготовленные из бактерий Bacillus sp., Lactobacillus sp., Enterococcus sp., Carnobacterium sp. Использование пробиотической добавки «Энзимспорин» в рыбоводстве находится в зачаточном состоянии, однако имеются сведения об эффективности выращивания радужной форели при его применении. В этой связи актуальной задачей является исследование влияния пробиотика «Энзимспорина» на морфофизиологические показатели молоди гибрида ленского осетра и белуги (ленбела) в существующих условиях культивирования. На начальном этапе рыбы были подразделены на 8 групп по 50 рыб по принципу пар аналогов. Крупные и мелкие особи подразделялись на 4 группы: контрольная и опытные – с дозой внесения Энзимспорина 1 г/кг; 1,5 г/кг; 2 г/кг корма соответственно. Продолжительность опыта составила 60 дней. Тотальные обловы проводились в начале и конце опыта, промежуточные – каждые 15 сут. Индивидуально взвешивалось 25–35% от общего количества рыбы в бассейне. Физиологическое состояние и иммунный статус ленбела оценивался по гематологическим и цитохимическим показателям. Кровь для анализа отбиралась из хвостовой вены рыб прижизненно. Состав лейкоцитов и долю незрелых форм клеток определяли в окрашенных по Паппенгейму мазках периферической крови на цифровом микроскопе. Фагоцитарная активность нейтрофилов рыб оценивалась с помощью лизосомально-катионного теста цитохимическим методом с бромфеноловым синим. За 2 мес. опыта основные гидрохимические показатели (рН, нитриты, нитраты, аммоний), температура воды и содержание растворенного в ней кислорода находились в пределах технологических норм. Лучшие абсолютные и относительные показатели роста получены в опытных группах, получавших пробиотик в дозе 1,5 г/кг корма. У этих рыб были отмечены высокие показатели: абсолютный и относительный прирост, абсолютная и относительная скорость роста, коэффициент массонакопления. Лучшая выживаемость зафиксирована в группе мелких годовиков ленбела при дозе пробиотика 2 г/кг корма. У крупных рыб максимальная выживаемость (80%) отмечена при дозе Энзимспорина 1 г/кг. В нейтрофилах крови рыб опытных групп достоверно больше лизосомального катионного белка – активация клеточного иммунитета.

1. Абросимова К.С. Изменение липидного обмена молоди бестера в процессе развития тимпании // Журнал фундаментальных и прикладных исследований Астраханского государственного университета. Естественные науки. – 2011. – № 1 (34). – С. 85–90.

2. Бессонов Н.М. Рыбохозяйственная гидрохимия / Н.М. Бессонов, Ю.А. Привезенцев. – Москва: Агропромиздат, 1987. – 158,[1] с.: ил., карт.; 22 см.

3. Бубунец Э.В. К вопросу об оценке температурных условий при культивировании осетровых в тепловодных хозяйствах // Рыбное хозяйство – 2017. – № 2. – С. 75–79.

4. Бурцев И.А., Николаев А.И., Сафронов А.С., Зуевский С.Е., Ефимов А.Б., Дудин К.В. Пути повышения эффективности промышленного воспроизводства осетровых рыб // Воспроизводство естественных популяций ценных видов рыб. – СПб.: ГосНИОРХ, 2010. – С. 29–31.

5. Дементьев Д.С., Калайда М.Л. Использование кормовой добавки на основе продуктов пчеловодства «Винивет» и минеральной цеолитсодержащей добавки «ZEOL» в кормлении стальноголового лосося // Зоотехния. – 2021. – № 9. – С. 23–27.

6. Жандалгарова А.Д., Поляков А.В., Бахарева А.А., Грозеску Ю.Н. Использование пробиотических препаратов с иммуномодулирующим действием в кормах для осетровых рыб при садковом выращивании // Известия Самарского научного центра РАН. – 2018. – Т. 20, № 2. – С. 107–111.

7. Жигин А.В. Выращивание осетровых в замкнутых системах // Обзорная информация. Прибрежное рыболовство и аквакультура. – 2006. – Вып. 2. – 52 с.

8. Житенева Л.Д., Макаров Э.В., Рудницкая О.А. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте) = The fundamentals of ichthtyohematology (in comparative aspekts) / Л.Д. Житенева, Э.В. Макаров, О.А. Рудницкая; Федер. гос. унитар. предприятие «Азов. науч.-исслед. ин-т рыб. хоз-ва». – Ростов н/Д: Эверест, 2004. – 311 с.: ил.; 20 см.; ISBN5–7509–0011–8 (в пер.)

9. Завьялов А.П., Есавкин Ю.И. Модель массонакопления и ее использование в рыбоводстве: Учебное пособие. – М.: Изд-во РГАУ-МСХА, 2011. – 110 с.

10. Кленьшин С.А., Есавкин Ю.И., Бубунец Э.В., Жигин А.В., Панов В.П., Грикшас С.А, Золотова А.В. Результаты выращивания молоди ленского осетра (Acipenser baerii Brandt) в УЗВ на различных рецептурах кормов // Рыбное хозяйство. – 2021. – № 5. – С. 89–96.

11. Лакин Г.Ф. Биометрия: Учебное пособие для биологических специальностей вузов. – М.: Высшая школа, 1990. – 351 с.

12. Есавкин Ю.И., Жигин А.В., Максименкова А.А. Влияние кормовой добавки «Энзимспорин» на физиолого-биохимические показатели радужной форели в садках на теплых водах // Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса. – 2020. – № 4. – С. 36–40.

13. Маммаев М.А. и др. Структура оболочек икры стерляди при выращивании в установке с замкнутым циклом водоснабжения // Ветеринария и кормление. – 2020. – № 7. – С. 32–34.

14. Николюкин Н.И. Отдаленная гибридизация осетровых и костистых рыб [Текст]: Теория и практика. – Москва: Пищ. пром-сть, 1972. – 335 с.: ил.; 21 см.

15. Плохинский Н.А. Биометрия [Текст] / Акад. наук СССР. Сиб. отд-ние. – Новосибирск: Изд-во Сиб. отд-ния АН СССР, 1961. – 364 с.: граф.; 27 см.

16. Пронина Г.И. Нормы гематологических, цитохимических и биохимических показателей для оценки состояния здоровья рыб и речных раков в аквакультуре: Утв. НТС Департамента ветеринарии Минсельхоза РФ 25 августа 2021 г. – М., 2020.

17. Пронина Г.И. О возможностях повышения иммунной устойчивости гидробионтов в аквакультуре // Известия Оренбургского ГАУ. – 2014. – № 3. – С. 180–183.

18. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Методология физиолого-иммунологической оценки гидробионтов: Учебное пособие. – СПб.: Лань, 2017. – 96 с.

19. Cruz PM., Ibáñez A.L, Hermosillo OAM., Saad HCR. Use of probiotics in aquaculture // ISRN Microbiol. – 2012. – Oct. – 16:916845. Doi:10.5402/2012/916845. PMID: 23762761; PMCID: PMC3671701.

20. Gormaz J.G., Fry J.P., Erazo M., Love D.C. Public Health Perspectives on Aquaculture // Curr Environ Health Rep. – 2014. – Jul. – 15; 1 (3):227–238. Doi:10.1007/s40572–014–0018–8. PMID: 25152863; PMCID: PMC4129235.

21. Irianto A., Austin B. Probiotics in aquaculture // Journal of Fish Diseases. – 2002. – № 25 (11). – Рр. 633–642.

22. Ikeogu F.C., Nsofor C.I. and Ikpeze O.O. A review of risk factors for fish diseases in aquatic environments // Proceedings of the 6th National Conference of the Society for Occupational Safety and Environmental Health (SOSEH). Princess Alexandra Auditorium, University of Nigeria, Nsukka, Enugu State, Nigeria. – 2010. – № 3–6. – November.

23. Kaplow L.S. A histochemical procedure for localizing and evaluating leukocyte alkaline phosphatase activity in smears of blood and marrow // Blood. – 1955. – № 10. – Рр. 1023–1029.

24. Wang Y.B., Li J.R., Lin J. Probiotics in aquaculture: challenges and outlook // Aquaculture. – 2008. – № 281. – Рр. 1–4.