Характеристика микробиома желудочно-кишечного тракта белой куропатки (Lagopus lagopus)

Белая куропатка распространена в северных регионах и предпочитает кустарниковую растительность. Зимой ее рацион ограничен побегами ив и берез, поэтому пищеварительная система куропаток адаптирована к усвоению грубой растительной пищи, что обеспечивается особенностями строения ЖКТ. Цель исследований – изучение микробиома пищеварительного тракта белой куропатки в зимний период. Объектом исследований являлись образцы содержимого зоба, тощей, подвздошной и слепой кишок. Анализ проводили методом ПЦР в реальном времени с использованием набора «Колонофлор Премиум». По результатам исследований в кишечнике белой куропатки были выявлены бактерии с целлюлозолитической и антагонистической активностью – такие, как Bacteroides spp., Blautia spp., Roseburia inulinivorans и Faecalibacterium prausnitzii. Наиболее многочисленными представителями являлись бактероиды, количество которых в слепых отростках составляла 3,0 × 10¹¹–4,0 × 10¹¹ ГЭ/г, в тощей и подвздошной кишках – 1,0 × 10⁷–9,0 × 10⁷ и 7,0 × 10⁷–1,0 × 10⁸ ГЭ/г соответственно. Roseburia inulinivorans в основном встречалась в содержимом слепых отростков, где ее концентрация находилась в диапазоне от 3,0 × 10⁶ до 2,0 × 10⁷ ГЭ/г. Faecalibacterium prausnitzii детектировалась в зобе на уровне 1,0 × 10⁵–4,0 × 10⁵ ГЭ/г, а также в тощей и подвздошной кишках в количестве 2,0 × 10⁶ ГЭ/г. Концентрация представителей рода Bifidobacterium в различных отделах ЖКТ находилась в диапазоне от 1,0 × 10⁷ до 8,0 × 10¹⁰ ГЭ/г, а Lactobacillus – от 1,0 × 10⁷до 4,0 × 10⁷ ГЭ/г. Метагенные бактерии Methanobrevibacter smithi не были обнаружены в ЖКТ белой куропатки, а Methanosphaera stadmanae был идентифицирован только в слепых отростках на уровне 9,0 × 10⁷–6,0 × 10⁸ ГЭ/г. Условно-патогенная микрофлора была представлена бактериями рода Acinetobacter, Escherichia, Enterobacter, Enterococcus, Staphylococcus. Выявленные представители симбиотической микрофлоры представляют научный интерес и могут быть использованы в качестве штаммов-продуцентов для разработки ферментативных и пробиотических средств.

1. Воронин Р.Н. Белая куропатка Большеземельской тундры: экология, морфология, хозяйственное значение. Ленинград: Санкт-Петербургская издательско-книготорговая фирма «Наука», 1978. 168 с. EDN: RWMFEJ

2. Исаев А.П. Тетеревиные птицы в Якутии // Влияние климатических и экологических изменений на мерзлотные экосистемы: Труды Третьей Международной конференции «Роль мерзлотных экосистем в глобальном изменении климата». Якутск: Якутский научный центр комплексных медицинских проблем СО РАМН, 2007. С. 35-41. EDN: RWYCTX

3. Потапов Р.Л. О происхождении и эволюции белых куропаток (род Lagopus, Tetraonidae) // Русский орнитологический журнал. 2016. Т. 25, № 1272. С. 1300-1308. EDN: VPMKLF

4. Андреев А.В. Адаптация птиц к зимним условиям Субарктики: Монография. Москва: Наука, 1980. 176 с. EDN: PODPUV

5. Кочкарев П.В. Роль слепых отростков белой куропатки (Lagopus lagopus Montin. 1776) в процессе регулирования микроэлементного состава // Вестник КрасГАУ. 2014. № 10 (97). С. 122-126. EDN: SZFFUB

6. Филатов А.В., Минин А.В., Николаев С.В. Структура микробиоты толстой кишки молодняка свиней в норме и при патологии желудочно-кишечного тракта // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2025. Т. 26, № 2. С. 388-395. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2025.26.2.388-395

7. Ilina L.A., Filippova V.A., Yildirim E.A., Brazhnik E.A. The succession of reindeer’ rumen symbiotic bacteria. Journal of Animal Science. 2021;99(3):482. https://doi.org/10.1093/jas/skab235.850

8. Hird S.M., Sánchez C., Carstens B.C., Brumfield R.T. Comparative Gut Microbiota of 59 Neotropical Bird Species. Front Microbiol. 2015;21(6):1403. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01403

9. Liu X., Mao B., Gu J., Wu J. et al. Blautia – a new functional genus with potential probiotic properties? Gut Microbes. 2021;13(1):1-21. https://doi.org/10.1080/19490976.2021.1875796

10. Nie K., Ma K., Luo W., Shen Z. et al. Roseburia intestinalis: A Beneficial Gut Organism From the Discoveries in Genus and Species. Front Cell Infect Microbiol. 2021;11:757718. https://doi.org/10.3389/fcimb.2021.757718

11. Филатов А.В., Николаев С.В., Сюткина А.С. Эффективность раннего применения пробиотического препарата при выращивании телят // Международный вестник ветеринарии. 2024. № 3. С. 155-161. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2024.3.155

12. Dridi B., Henry M., El Khéchine A., Raoult D. et al. High Prevalence of Methanobrevibacter smithii and Methanosphaera stadtmanae Detected in the Human Gut Using an Improved DNA Detection Protocol. PLoS ONE. 2009;4(9): e7063. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0007063