Анатомические особенности листьев голубики узколистной (Vaccinium angustifolium Aiton) в условиях Московского региона

Приведены результаты изучения особенностей анатомического строения свежесобранных листьев голубики узколистной (Vaccinium angustifolium Aiton), интродуцированной в условия Дендрологического сада имени Р.И. Шредера (г. Москва). Отсутствие в настоящее время литературных сведений об анатомической адаптации V. angustifolium к изменению агроклиматических условий культивирования затрудняет оценку интродукционного потенциала этой ценной ягодной культуры. Поэтому изучение анатомических особенностей листьев V. angustifolium в условиях интродукции Московского региона является актуальным. Сбор растительного сырья для анализа проводили в июле 2023–2025 гг. в фазе массового плодоношения растений. Изучение анатомических признаков листьев растений осуществляли в соответствии с требованиями Государственной фармакопеи РФ. Анализ анатомического строения показал, что листья V. angustifolium дорсовентральные, листовая пластинка гипостоматическая. Устьичный аппарат листьев парацитный. Главная жилка листовой пластинки и черешка листа представлена закрытым коллатеральным проводящим пучком. За весь период наблюдений у растений были отмечены увеличение общей толщины листа, верхней и нижней эпидермы, столбчатого и губчатого мезофилла, изменение соотношения губчатого и столбчатого мезофилла, а также увеличение плотности расположения устьиц. Так, коэффициент палисадности листа V. angustifolium с 2023 г. в 2025 г. увеличился на 7%, а устьичный индекс возрос на 3,5%, что говорит об усилении фотосинтетической активности растений и их адаптации к агроклиматическим условиям Московского региона. Установленные анатомо-диагностические признаки листьев V. angustifolium могут быть использованы при составлении анатомических атласов культурных растений, идентификации и оценке подлинности растительного сырья, оценке адаптивного потенциала растений-интродуцентов, а также послужат теоретической основой для разработки методики интродукции ягодных культур.

1. Flora of North America. Vol. 8: Magnoliophyta: Paeoniaceae to Ericaceae / FNA Ed Committee. New York, USA: Oxford University Press, 2009. 624 p.

2. Коровкин О.А., Черятова Ю.С. Ботаника: Учебник. Москва: КноРус, 2024. 464 с. EDN: CBVVAR

3. Макаров С.С., Сунгурова Н.Р., Чудецкий А.И. Декоративная дендрология: Учебник для вузов. Санкт-Петербург: Лань, 2024. 340 с. EDN: ITKLBS

4. Громадин А.В., Сахоненко А.Н. Дендрологический справочник. Деревья и кустарники, пригодные для культивирования в открытом грунте на территории России: Справочное издание. Москва: Товарищество научных изданий КМК, 2025. 695 с. EDN: BXNCKH

5. Cappiello P.E., Dunham S.W. Seasonal variation in low-temperature tolerance of Vaccinium angustifolium Ait. Horticultural Science. 1994;29(4):302-304

6. Радкевич Т.В. Современное состояние и тенденции развития культуры голубики // Плодоводство. 2022. Т. 34. С. 211-219. https://doi.org/10.47612/0134-9759-2022-34-211-219

7. Ly C., Ferrier J., Gaudet J., Yockell-Lelièvre J. et al. Vaccinium angustifolium (lowbush blueberry) leaf extract increases extravillous trophoblast cell migration and invasion in vitro. Phytotherapy Research. 2018;32(4):705-714. https://doi.org/10.1002/ptr.6021

8. Miller K., Feucht W., Schmid M. Bioactive Compounds of Strawberry and Blueberry and Their Potential Health Effects Based on Human Intervention Studies: A Brief Overview. Nutrients. 2019;11(7):1510. https://doi.org/10.3390/nu11071510

9. Wood E., Hein S., Heiss C., Williams C. et al. Blueberries and cardiovascular disease prevention. Food and Function. 2019;10(12):7621-7633. https://doi.org/10.1039/c9fo02291k

10. Черятова Ю.С. Актуальные аспекты морфолого-анатомического анализа лекарственного растительного сырья – листьев лавровишни лекарственной (Laurocerasus officinalis) // Экосистемы. 2020. № 21 (51). С. 85-92. EDN: DJYAYG

11. Черятова Ю.С. Анатомо-диагностические признаки лекарственного растительного сырья Eucalyptus globulus Labill // Эпоха науки. 2019. № 20. С. 620-626. https://doi.org/10.24411/2409-3203-2019-12130

12. Bacelar E.A., Correia C.M., Moutinho-Pereira J.M., Gonçalves B.C. et al. Sclerophylly and leaf anatomical traits of five field-grown olive cultivars growing under drought conditions. Tree Physiology. 2004;24:233-239. https://doi.org/10.1093/treephys/24.2.233

13. Oberbauer S.F., Tweedie C.E., Welker J.M., Fahnestock J.T. et al. Tundra CO2 fluxes in response to experimental warming across latitudinal and moisture gradients. Ecological Monographs. 2007;77:221-238. https://doi.org/10.1890/06-064

14. Hartikainen K., Nerg A.-M., Kivimäenpää M., Kontunen-Soppela S. et al. Emissions of volatile organic compounds and leaf structural characteristics of European aspen (Populus tremula) grown under elevated ozone and temperature. Tree Physiology. 2009;29:1163-1173. https://doi.org/10.1093/treephys/tpp033

15. Sharp E.D., Sullivan P.F., Steltzer H., Csank A.Z. et al. Complex carbon cycle responses to multi-level warming and supplemental summer rain in the high Arctic. Global Change Biology. 2013;19:1780-1792. https://doi.org/10.1111/gcb.12149

16. Slot M., Winter K. In situ temperature response of photosynthesis of 42 tree and liana species in the canopy of two Panamanian lowland tropical forests with contrasting rainfall regimes. New Phytologis. 2017;214:1103-1117. https://doi.org/10.1111/nph.14469

17. Welker J.M., Fahnestock J.T., Henry G.H.R., O’dea K.W. et al. CO2 exchange in three Canadian High Arctic ecosystems: Response to long-term experimental warming. Global Change Biology. 2004;10:1981-1995. https://doi.org/10.1111/j.1365-2486.2004.00857.x

18. Natali S.M., Schuur E.A.G., Trucco C., Pries C.E.H. et al. Effects of experimental warming of air. Global Change Biology. Chang. Biol. 2011;17:1394-1407. https://doi.org/10.1111/j.1365-2486.2010.02303.x

19. Natali S.M., Schuur E.A.G., Webb E.E., Pries C.E.H. et al. Permafrost degradation stimulates carbon loss from experimentally warmed tundra. Ecology. 2014;95:602-608. https://doi.org/10.1890/13-0602.1

20. Berry J., Björkman O. Photosynthetic response and adaptation to temperature in higher plants. Annual Review of Plant Physiology. 1980;31:491-543. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.31.060180.002423

21. Yamori W., Hikosaka K., Way D.A. Temperature response of photosynthesis in C3, C4, and CAM plants: Temperature acclimation and temperature adaptation. Photosynthesis Research. 2014;119:101-117. https://doi.org/10.1007/s11120-013-9874-6

22. Schollert M., Kivimäenpää M., Michelsen A., Blok D. et al. Leaf anatomy, BVOC emission and CO2 exchange of arctic plants following snow addition and summer warming. Annals of Botany. 2017;119:433-445. https://doi.org/10.1093/aob/mcw237

23. Carroll C.J.W., Knapp A.K., Martin P.H. Dominant tree species of the Colorado Rockies have divergent physiological and morphological responses to warming. Forest Ecology and Management.2017;402:234-240. https://doi.org/10.1016/j.foreco.2017.07.048

24. Chartzoulakis K., Bosabalidis A., Patakas A., Vemmos S. Effects of water stress on water relations, gas exchange and leaf structure of olive tree. Acta Horticultura. 2000;537:241-247. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2000.537.25

25. Schollert M., Kivimäenpää M., Valolahti H.M., Rinnan R. Climate change alters leaf anatomy, but has no effects on volatile emissions from arctic plants. Plant, Cell & Environment. 2015;38:2048-2060. https://doi.org/10.1111/pce.12530

26. Del Bo’ C., Cao Y., Roursgaard M., Riso P. et al. Anthocyanins and phenolic acids from a wild blueberry (Vaccinium angustifolium) powder counteract lipid accumulation in THP-1-derived macrophages. European Journal of Nutrition. 2016;55(1):171-182. https://doi.org/10.1007/s00394-015-0835-z

27. Yang L., Liu L., Wang Z., Zong Y. et al. Comparative anatomical and transcriptomic insights into Vaccinium corymbosum flower bud and fruit throughout development. BMC Plant Biology. 2021;21(1):289. https://doi.org/10.1186/s12870-021-03067-6

28. Zhu B., Guo P., Wu S., Yang Q. et al. A Better Fruit Quality of Grafted Blueberry Than Own-Rooted Blueberry Is Linked to Its Anatomy. Plants (Basel). 2024;13(5):625. https://doi.org/10.3390/plants13050625

29. Яковлев А.П., Морозов О.В. Развитие вегетативной сферы голубики узколистной при интродукции в условиях Беларуси // Лесохозяйственная информация. 2008. № 12. С. 40-44

30. Макаров С.С., Кузнецова И.Б., Упадышев М.Т. и др. Особенности клонального микроразмножения клюквы болотной (Oxycoccus рalustris Pers.) // Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51, № 1. С. 67-76. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-1-67-76

31. Макаров С.С., Родин С.А., Кузнецова И.Б. и др. Влияние освещения на ризогенез ягодных растений при клональном микроразмножении // Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51, № 3. С. 520-528. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-3-520-528

32. Makarov S.S., Kuznetsova I.B., Chudetsky A.I., Rodin S.A. Obtaining High-Quality Planting Material of Forest Berry Plants by Clonal Micropropagation for Restoration of Cutover Peatlands. Russian Forestry Journal. 2021;2:21-29. https://doi.org/10.17238/0536-1036-2021-2-21-29

33. Зорин Д.А. Интродукция Vaccinium angustifolium Ait. в Удмуртии // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2022. № 4. С. 26-32. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2022-4-26-32

34. Макаров С.С., Кузнецова И.Б., Заушинцена А.В. и др. Повышение эффективности многоцелевого лесопользования на выработанных торфяниках // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. 2022. № 3. С. 91-102. https://doi.org/10.37482/0536-1036-2022-3-91-102

35. Макаров С.С., Упадышев М.Т., Кузнецова И.Б. и др. Применение освещения различного спектрального диапазона при клональном микроразмножении лесных ягодных растений // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. 2022. № 6. С. 82-93. https://doi.org/10.37482/0536-1036-2022-6-82-93

36. Макаров С.С., Тяк Г.В., Чудецкий А.И. и др. Перспективы плантационного выращивания лесных ягодных растений в северных регионах России // Арктика 2035: актуальные вопросы, проблемы, решения. 2023. № 3 (15). С. 62-77. EDN: KFKHUA

37. Макаров С.С., Феклистов П.А., Кузнецова И.Б. и др. Технологии размножения и возделывания видов и сортов голубики для создания биоресурсной коллекции // Достижения науки и техники АПК. 2023. Т. 37, № 12. С. 11-16. https://doi.org/10.53859/02352451_2023_37_12_11

38. Макаров С.С., Чудецкий А.И., Сахоненко А.Н. и др. Создание биоресурсной коллекции ягодных растений на базе РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева // Тимирязевский биологический журнал. 2023. № 4. С. 23-33. https://doi.org/10.26897/2949-4710-2023-4-23-33

39. Макеева Г.Ю., Тяк Г.В., Макеев В.А., Макаров С.С. Создание первых российских сортов голубики узколистной (Vaccinium angustifolium Ait.) // Современное садоводство. 2023. № 1. С. 1-14. https://doi.org/10.52415/23126701_2023_0101

40. Makarov S.S., Vinogradova V.S., Khanbabaeva O.E. et al. Prospects for Enhanced Growth and Yield of Blueberry (Vaccinium angustifolium Ait.) Using Organomineral Fertilizers for Reclamation of Disturbed Forest Lands in European Part of Russia. Agronomy. 2024;14(7):1498. https://doi.org/10.3390/agronomy14071498

41. Макаров С.С., Чудецкий А.И., Кузнецова И.Б. и др. Совершенствование технологии адаптации Vaccinium angustifolium и Vaccinium corymbosum ex vitro в открытом грунте // Техника и технология пищевых производств. 2025. Т. 55, № 1. С. 107-121. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2025-1-2558

42. Атрощенко Г.П., Логинова С.Ф., Кошман А.И. Оценка феноритмики сезонного развития и зимостойкости таксонов рода Vaccinium (голубики) для селекции и практики // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2019. № 56. С. 37-42. https://doi.org/10.24411/2078-1318-2019-13037

43. Государственная фармакопея Российской Федерации. Изд. XXI. Т. 1. Москва: Научный центр экспертизы и средств медицинского применения, 2008. 704 с.

44. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований): Учебник. Изд.6-е. Москва: Альянс, 2011. 350 с.

45. Hernández-Fuentes C., Bravo L.A., Cavieres L.A. Photosynthetic responses and photoprotection strategies of Phacelia secunda plants exposed to experimental warming at different elevations in the central Chilean Andes. Alpine Botany. 2015;125:87-99. https://doi.org/10.1007/s00035-015-0151-5

46. Cheryatova Yu.S. Actual aspects of anatomical research of medicinal plant material of Vinca minor L. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021;723:022036. https://doi.org/10.1088/1755-1315/723/2/022036

47. Cheryatova Y. Arnautova, G. Comparative morphological and anatomical study of Primula macrocalix Bge. and Primula sibthorpii Hoffm. leaves growing in Dagestan. E3S Web of Conferences, 2021;254:01018. https://doi.org/10.1051/e3sconf/202125401018