Определение фитонутриентного профиля экстракта сладкого каштана и его влияния на жизнеспособность новорожденных ягнят

При определении фитонутриентного профиля сладкого каштана наблюдали наибольшее количество соединений среди флавоноидов и аминокислот, в то время как нефлавоноидный тип полифенолов, кумарины, дубильные вещества, жирные кислоты представлены гораздо меньшим количеством молекул. Категория карбоновых кислот содержала 2 представителя, а у эфиров – всего 1 представитель. В экстракте сладкого каштана обнаруженные флавоноиды включали в себя около 33 фитонутриентов – таких, как нарингенин, рутин, апигенин, лютеолин, гиперозид, акацетин, изорамнетин. В совокупности результаты наших исследований свидетельствуют о сложном фитонутриентном составе экстрактов сладкого каштана, включающем в себя множество соединений, которые могут обладать различными полезными для здоровья животных свойствами. Как в экстракте сладкого каштана, так и в экстракте конского каштана, была обнаружена такая незаменимая аминокислота, как триптофан. Кроме того, в обоих экстрактах были обнаружены некоторые неосновные аминокислоты – такие, как глутаминовая кислота и тирозин. В свою очередь, на долю флавоноидов среди полифенолов, обнаруженных в экстракте конского каштана, приходится около 54,73% от общего количества полифенолов, что указывает на то, что этот экстракт можно считать хорошим источником флавоноидов. В целом исследованные экстракты являются ценными источниками флавоноидов и полифенолов. При сравнительной оценке морфологических, а также биохимических показателей крови опытной и контрольной групп ягнят было установлено, что динамика нормализации показателей у опытной группы выше, чем у контрольной, что может служить маркером фитобиотической активности экстракта сладкого каштана. Расчет абсолютного среднесуточного прироста и относительного прироста живой массы за 6 дней эксперимента опытной группы показал, что среднее значение по АСП живой массы ягнят опытной группы составило 408,4±4,7 г/день, а среднее арифметическое значение по относительному приросту – 28,1%; в то время как абсолютный среднесуточный прирост живой массы ягнят контрольной группы составил 298,6±3,9 г/день.

1. Симонов П.Г., Алиев А.Ю., Федотов С.В. Определение остаточного количества действующих веществ препарата «Аргумистин» в молоке при лечении субклинических маститов // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2024. № 2 (50). С. 254-260. https://doi.org/10.36871/vet.san.hyg.ecol.202402012

2. Варданян З.С., Байрамян Л.Е., Саакян Г.Р., Мхитарян А.К. и др. Биоэкологическая характеристика растений облепихи крушиновидной (Hippophae rhamnoides L.) в различных местообитаниях Лорийского марза // Тимирязевский биологический журнал. 2025. № 1. С. 202531202. https://doi.org/10.26897/2949-4710-2025-3-1-2-02

3. Шертаева Н.Т., Шаграева Б.Б., Кыбраева Н.С., Битурсын С.С. Количественное определение биологически активных веществ растения Lepidium ruderale // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2022. № 3. С. 70-73. https://doi.org/10.17513/mjpfi.13370

4. Zhou T., DallaSanta K., Nazarenko L., Schmidt G.A. et al. The impact of increasing stratospheric radiative damping on the quasi-biennial oscillation period. Atmos. Chem. Phys. 2021;21(9):7395-7407. https://doi.org/10.5194/acp-21-7395-2021

5. Шейбак В.М., Павлюковец А.Ю. Триптофан – ключевой метаболит гомеостаза и регулятор функций организма // Гематология и гастроэнтерология. 2021. Т. 5. С. 143-149. https://doi.org/10.25298/2616-5546-2021-5-2-143-149

6. Höglund E., Øverli Ø., Winberg S. Tryptophan Metabolic Pathways and Brain Serotonergic Activity: A Comparative Review. Frontiers in endocrinology. 2019;10:158-164. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00158

7. Лисицын А.Б., Чернуха И.М., Лунина О.И. Конъюгированная линолевая кислота: новые возможности для создания функциональных мясных продуктов // Все о мясе. 2018. № 5. С. 14-17. https://doi.org/10.21323/2071-2499-2018-5-14-17

8. Blondeau N., Lipsky R.H., Bourourou M., Duncan M.W. et al. Alpha-linolenic acid: an omega-3 fatty acid with neuroprotective properties-ready for use in the stroke clinic? Biomed. Res. Int. 2015;24:1512-1521. https://doi.org/10.1155/2015/519830

9. Терещук Л.В., Старовойтова К.В., Лобова Т.В., Чуглина К.С. Технологические аспекты производства кислоты олеиновой из рапсового масла // Техника и технология пищевых производств. 2013. № 2(29). С. 62-67.

10. Visioli F., Poli A. Fatty acids and cardiovascular risk. Evidence, lack of evidence, and diligence. Nutrients. 2020;9(12):3760-3782. https://doi.org/10.3390/nu12123782

11. Olszowy-Tomczyk M., Wianowska D. Antioxidant properties of Selected Flavonoids in Binary Mixtures-Considerations on Myricetin, Kaempferol and Quercetin. Int. J. Mol. Sci. 2023;13:24-36. https://doi.org/10.3390/ijms241210070

12. Yu X., Li W., Ma Y., Tossel K. et al. GABA and glutamate neurons in the VTA regulate sleep and wakefulness. Nat. Neurosci. 2019;22:106-119. https://doi.org/10.1038/s41593-018-0288-9

13. Бобрышева Т.Н., Анисимов Г.С., Золоторева М.С., Бобрышев Д.В. и др. Полифенолы как перспективные биологически активные соединения // Вопросы питания. 2023. Т. 92, № 1 (545). С. 28-35. https://doi.org/10.33029/0042-8833-2023-92-1-92-107

14. Юлдашбаев Ю.А., Муханов Н.Б., Кудияров Р.И., Куликова К.А. и др. Рост и развитие ягнят казахской грубошерстной курдючной породы в условиях Приаралья // Аграрная наука. 2018. Т. 7-8. С. 42-44. EDN: XZFAHB

15. Авдеенко В.С., Федотов С.В., Булатов Р.Н. Применение селеноорганического препарата «Селенолин» для профилактики гестоза у суягных овец и повышение оплодотворяемости в послеродовый период // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2016. № 12 С. 91-95. EDN: XDRURJ

16. Santos Júnior D.A., Olinda R.G., Oliveira Filho E.F., Soares P.C., et al. Nutritional muscular dystrophy in lambs reared on pasture in semiarid region of Brazil. Research, Society and Development. 2020;9(7): e506974642. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i7.4642

17. Holmoy I.H., Waage S., Granquist E.G., L’Abée-Lund T.M. et al. Early neonatal lamb mortality: postmortem findings. Animal. 2017;11(2):295-305. https://doi.org/10.1017/S175173111600152X

18. Swarnkar C.P., Gowane G.R., Prince L.L.L. Sonawane G.G. Risk factor analysis for neonatal lamb mortality in Malpura sheep. Indian Journal of Animal Sciences. 2019;89:640-644. https://doi.org/10.56093/ijans.v89i6.91121

19. McHugh N., Berry D.P. Pabiou, T. Risk factors associated with lambing traits. Animal. 2016;10:89-9511. https://doi.org/10.1017/S1751731115001664

20. Абонеев В.В., Абонеева Е.В. Некоторые пути сохранения и совершенствования племенных ресурсов в отечественном овцеводстве // Овцы, козы, шерстяное дело. 2022. № 3. С. 3-6. https://doi.org/10.26897/2074-0840-2022-3-3-6