Георгий Петрович Дюльгер, д-р ветеринар. наук, доцент, профессор
кафедра ветеринарной медицины
127434; ул. Тимирязевская, 49; Москва
Georgy P. Dyulger, DSc (Vet), Associate Professor, Professor
Department of Veterinary Medicine
127434; 49 Timiryazevskaya St.; Moscow
Дмитрий Иванович Лазарев, канд. с.-х. наук, научный сотрудник, руководитель
143700; Московская область; Шаховская; Стариково
Dmitry I. Lazarev, CSc (Ag), Research Associate, Head
143700; Moscow Region; Shakovskaya; Starikovo
Сергей Владимирович Акчурин, д-р ветеринар. наук, доцент, профессор
кафедра ветеринарной медицины
127434; ул. Тимирязевская, 49; Москва
Sergey V. Akchurin, DSc (Vet), Associate Professor, Professor
Department of Veterinary Medicine
127434; 49 Timiryazevskaya St.; Moscow
Ирина Владимировна Акчурина, канд. ветеринар. наук, доцент, доценткафедры
кафедра ветеринарной медицины
127434; ул. Тимирязевская, 49; Москва
Irina V. Akchurina, CSc (Vet), Associate Professor, Associate Professor at the Department
Department of Veterinary Medicine
127434; 49 Timiryazevskaya St.; Moscow
Владислав Сергеевич Бычков, канд. ветеринар. наук, доцент
кафедра ветеринарной медицины
127434; ул. Тимирязевская, 49; Москва
Vladislav S. Bychkov, CSc (Vet), Associate Professor
Department of Veterinary Medicine
127434; 49 Timiryazevskaya St.; Moscow
Дмитрий Валерьевич Свистунов, канд. ветеринар. наук, доцент
кафедра ветеринарной медицины
127434; ул. Тимирязевская, 49; Москва
Dmitriy V. Svistounov, CSc (Vet), Assistant
Department of Veterinary Medicine
127434; 49 Timiryazevskaya St.; Moscow
Статья посвящена обзору биотехнологии производства и трансплантации эмбрионов in vivo в коневодстве. Согласно регистру IETS только за последние 5 лет в мировом коневодстве проведено 152815 эмбриотрансферов, подавляющее большинство которых (125017, или 81,81 %) выполнено с применением in vivo эмбрионов. Для подсадки применяют главным образом свежеполученные зародыши. Доля криотрансфера по сравнению с переносом свежеполученных эмбрионов ничтожно мала (0,48 % против 99,52 %). Зародыши от кобыл-доноров обычно получают без индукции суперовуляции, непосредственно из полости матки. Оптимальное время для вымывания эмбриона – 7–8-е сутки после овуляции. Катетеризацию шейки матки проводят через влагалище при помощи гибкого двухканального силиконового катетера с надувным баллончиком под контролем пальцев руки в одноразовой гинекологической перчатке. Эффективность вымывания эмбрионов достигает в среднем 50–65 %. Рекомендуется синхронизировать половой цикл донора с половым циклом 2–3 реципиентов, чтобы по крайней мере у одной из них овуляция наступила через 1–2 дня после овуляции кобылы-донора. Синхронизацию течки и овуляции можно вызвать с помощью препаратов различных фармакологических групп, обладающих прогестагенной (прогестерон, альтреногест) и/или лютеолитической (нативный простагландин F2a или его высокоактивный синтетический аналог – клопростенол) активностью, в сочетании с препаратами, запускающими овуляцию (деслорелин или ХГЧ). Пересадку зародышей в матку производят трансцервикально маноутеральным и визоутеральным способами. При первом (классическом) способе подсадки эмбриона в матку катетеризация цервикального канала проводится под мануальным контролем, при втором – с использованием двухстворчатого влагалищного зеркала с фиксацией нижней губы влагалищной части шейки матки гинекологическими щипцами Уилшера. Эффективность маноутерального (классического) способа при эмбриотрансфере свежеполученными эмбрионами достигает 65,5–77,8 %, по методу Уилшера – 90,9–93,4 %.
This article provides a review of the biotechnology concerning in vivo embryo production and transfer in the equine industry. According to the IETS registry, a total of 152,815 embryo transfers have been performed globally in horse breeding over the past five years alone, with the vast majority (125,017, or 81.81 %) utilizing in vivo embryos. Primarily, freshly recovered embryos are used for transfer. The proportion of cryopreserved embryo transfers remains negligible compared to fresh embryo transfers (0.48 % vs. 99.52 %). Embryos are typically recovered from donor mares without superovulation induction, directly from the uterine lumen. The optimal time for embryo flushing is 7–8 days post-ovulation. Cervical catheterization is performed transcervically, via the vagina, using a flexible double-lumen silicone catheter equipped with an inflatable cuff, under digital guidance (with a gloved hand). The average embryo recovery rate typically ranges from 50–65 %. It is recommended to synchronize the donor’s estrous cycle with those of 2–3 recipients, ensuring that at least one recipient ovulates 1–2 days after the donor mare. Estrus and ovulation synchronization can be induced using compounds from various pharmacological groups that possess progestagenic (e. g., progesterone, altrenogest) and/or luteolytic (e. g., native prostaglandin F2α or its highly active synthetic analog – cloprostenol) activity, often in combination with ovulation-inducing agents (e. g., deslorelin or hCG). Embryo transfer into the uterus is performed transcervically, using either the manual-uterine or visual-uterine technique. In the first (classical) technique of uterine embryo transfer, cervical canal catheterization is guided by manual control. The second technique involves using a Polansky speculum, with the ventral lip of the vaginal cervix stabilized by Wilshir cervical forceps. The efficiency of the manual-uterine (classical) technique for fresh embryo transfer achieves pregnancy rates of 65.5–77.8 %, whereas the Wilshir technique yields 90.9–93.4 %.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.